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項目介紹

目前，基于質(zhì)譜的蛋白質(zhì)組學方法能夠?qū)崿F(xiàn)對蛋白質(zhì)的定性和定量，以及復雜樣本中的翻譯后修飾測定，但是，常規(guī)的蛋白質(zhì)組學需要大量樣本，比如細胞需要5×10⁶，組織需要30mg。對于一些特殊的樣本類型，比如流式分選的細胞、原代培養(yǎng)細胞，以及一些臨床穿刺組織、玻璃體、房水等，這些樣品類型珍貴、不易獲取、樣本量少，往往達不到常規(guī)蛋白質(zhì)組學對于樣本量的要求。微量蛋白質(zhì)組細胞用量低至200個，輕松實現(xiàn)微量樣本的檢測自由。

微量蛋白質(zhì)組

1）主流富集方法+革命性質(zhì)譜策略，實現(xiàn)微量、珍稀樣本的蛋白質(zhì)檢測

2）磁珠無偏好富集蛋白組分，去除高豐度干擾，突破蛋白檢測深度

3）4D-DIA四維全息掃描，高穩(wěn)定性，高重復性，適合大隊列樣品分析

適用樣品類型

微量蛋白質(zhì)組有效解決了部分老師樣本量少、樣本珍稀、難獲得等問題，并且也適用于一些特殊樣品類型，比如臨床穿刺組織、腦脊液、原代細胞、微量血液等。

主流富集方法+革命性質(zhì)譜策略

（1）SP3技術(shù)

蛋白質(zhì)組學分析的關(guān)鍵步驟是蛋白質(zhì)的提取和前處理過程，以保證下游檢測的靈敏度。SP3（single-pot solid-phase-enhanced sample preparation）是主流的樣品處理技術(shù)之一，可對蛋白質(zhì)實現(xiàn)無偏倚和幾乎無損的處理，其原理是利用磁珠表面攜帶的羧基基團在高濃度有機溶劑的驅(qū)動下與蛋白結(jié)合，磁珠上的蛋白在水溶液中被胰蛋白酶酶解。酶解后的蛋白可在水溶液條件下洗脫，洗脫下的蛋白/肽段可進行質(zhì)譜分析，主要操作流程見下圖。所有步驟在一個管中即可完成，設(shè)備和流程簡單，用時短，速度快，效率高。

2）4D-DIA技術(shù)

微量蛋白質(zhì)組將DIA與PASFE技術(shù)相結(jié)合，基于全新一代timsTOF Pro2質(zhì)譜平臺，實現(xiàn)近乎100%的離子利用率，提高低豐度肽段的譜圖質(zhì)量，同時靈敏度、掃描速度、分離能力全面提升，既能滿足鑒定深度又能兼顧穩(wěn)定性，尤適用于大隊列樣品的分析。

樣品要求

送樣前請聯(lián)系技術(shù)經(jīng)理具體溝通。

項目案列